质粒构建(五步学习质粒构建原理)

质粒构建是分子生物学研究中最常用的实验技术。其原理取决于限制性核酸内切酶、DNA连接酶和其他修饰酶的作用。在分别适当切割和修饰靶基因和载体DNA后，将它们连接在一起，然后导入宿主细胞，从而可以实现靶基因在宿主细胞中的正确表达。

有许多方法来构建质粒，例如常规的T4连接酶。以下是如何用T4连接酶构建质粒。T4连接酶可用于平端或粘端连接，但一般推荐使用粘端。

1.质粒载体可以通过单酶或双酶消化来制备。一般推荐双酶消化。其实目的只有一个，把向量的结尾做得尽可能具体，防止自连。

加水至50ul，在37C下孵育3~4小时，每隔一段时间摇动并离心，以防止液滴蒸发到试管盖上。线性化的载体通过在Youyuanwang中酶切后切割载体的凝胶来回收。

对于双消化1和2，在设置消化系统时要考虑NEBbuffer中的消化温度和活性，可以在NEB公司主页的双消化查找器中查询。

2.根据目的序列构建引物后，如果目的基因片段只有几十kb，可以选择退火使插入片段成为互补序列。

(1)引物设计方法:以板栗为例，如选择的限制性内切酶为BglII和HindIII，则根据限制性位点的顺序在引物两端添加粘性末端碱基序列。

引物的合成形式:5’-gatcnnnnnnnnnnnn-3’

3 '-nnnnnnnnnnnnnnnnnnn-5 '

(2)按照以下触地程序运行PCR仪95c和5min2C /s时为95–85C；0.1C /s时为85–25C；保持在4摄氏度.

3.线性化的质粒载体通过T4 DNA酶与退火产物连接。

一般来说，T4酶连接是在16℃过夜进行的。

注意:连接可以通过选择一个公式来计算，通常克隆载体与插入片段的更佳摩尔比为1:2，即插入片段的更佳量为0.06 pmol。对应于这些摩尔数的DNA质量可以通过以下公式粗略计算:

克隆载体的更佳剂量= [0.0碱基对的克隆载体在优优资源网2 ]ng (0.03 pmol)

更佳插入剂量= [0.04碱基插入数]ng (0.06 pmol)

4.转换

将连接产物转化入受体细菌(通常为DH5a)，包被并培养过夜。注意质粒的抗性，选择相应的平板。

5.选择单克隆抗体并进行鉴定

挑板上的单克隆培养物可以通过PCR或酶消化进行初步鉴定，并且初步

对鉴定的阳性克隆进行测序。

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